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技术平台

编码解决「能测多少」,ARMS 解决「测得准不准」,液滴解决「反应如何稳定地分成上万份」。 三者叠在一起,才是单管 10–100 个靶点的完整解法。

Pillar 01

2N 指数级
超多重数字 PCR

常规多重 PCR 里,一个荧光通道对应一个靶标——想多测一重,就得多加一个通道, 而仪器的通道数物理上是有上限的。这条路径的容量增长是线性的。

指数级超多重换了一个思路:把 N 个通道的亮/暗组合本身当作编码位。 每个靶标被分配一组独特的通道组合,检测时读的是「组合模式」而非单一通道信号, 于是可分辨的靶标空间从 N 变成 2N。

编码维度
荧光通道组合(亮 / 暗)
容量关系
靶标数 ≈ 2N,随通道数指数增长
单管检测
10–100 个靶点
定量方式
绝对定量,无需标准曲线
ENCODING MATRIX CH 01–06 ACTIVE
POSITIVE NEGATIVE CHANNEL
线性方案与指数方案的容量对照
荧光通道数线性多重(1 通道 = 1 靶标)指数级超多重(2N)倍数差
44 重16 重4×
66 重64 重≈ 10.7×
88 重256 重32×
1010 重1 024 重≈ 102×

注:上表为编码容量上限的理论推演,实际单管检测靶点数受试剂体系、信号分辨能力与算法解码约束, 当前平台实现的单管检测范围为 10–100 个靶点。

Pillar 02

第三代 ARMS
技术

ARMS(Amplification Refractory Mutation System)利用引物 3′ 端的碱基配对特异性: 只有与模板完全配对时才高效延伸,末端错配则扩增受阻。 这一特性让单碱基差异成为可判读的信号。

第三代体系在引物设计、酶体系与缓冲条件上做了系统性优化, 把特异性从「能区分」提升到「在野生型背景中仍能优先扩增突变模板」, 从而支撑低频突变的检出。

识别精度
单个碱基差异(1 bp)
选择性
野生型背景下优先扩增突变型
典型场景
低频突变、耐药位点、掺伪物种鉴别
与编码协同
ARMS 负责特异性,2N 编码负责多重数
FIG. DROPLET PARTITION
Pillar 03

「固态油隔水」
液滴技术

数字 PCR 的精度来自「分割」:把一份反应体系拆成大量彼此独立的小体积单元, 每个单元里目标分子数量服从泊松分布,再通过计数阳性比例反推原始浓度。

「固态油隔水」以固态油相作为分隔介质,把水相反应体系切成稳定的独立单元。 相比依赖表面活性剂的乳化体系,固态油相在运输、温控与长时间孵育中更不易合并, 反应单元的边界更稳定——这直接决定了定量结果的重复性。

分隔方式
固态油相分隔水相反应单元
单元独立性
物理隔离,阻断交叉污染与非特异性扩增
基质耐受
对复杂样本(痰液、粪便、食品基质、中药提取物)抑制物耐受性更强
定量原理
泊松分布计数,无需标准曲线
Pillar 04

全自动一体化

超多重的价值只有在结果可复现时才成立。把人工节点压到最少,是让方案能进常规实验室的前提。

STEP 01

加样与体系构建

样本与反应体系在封闭耗材内完成混合,减少开盖操作带来的气溶胶污染风险。

STEP 02

液滴分割与扩增

固态油隔水体系将反应分割为独立微单元,随后进入温控循环完成扩增。

STEP 03

多通道荧光读数

逐单元读取各通道的亮/暗状态,输出的是每个单元的完整编码模式,而非单通道强度。

STEP 04

解码与绝对定量

按预设编码表还原靶标身份,结合泊松分布计算各靶标的绝对拷贝数,直接给出浓度结果。

需要评估技术适配性?

不同样本类型、靶标数量与检测通量对方案的要求差别很大。告诉我们你的场景,技术团队会给出具体建议。

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